| 著者一覧 |
| 中村義一 | 東京大学 医科学研究所 基礎医科学部門 教授 |
| 稲田利文 | 名古屋大学 理学研究科 生命理学専攻 助教授 |
| 中村幸治 | 筑波大学 生命環境科学研究科 助教授 |
| 三好啓太 | 徳島大学 ゲノム機能研究センター 分子機能解析分野 COE研究員 |
| 塩見美喜子 | 徳島大学 ゲノム機能研究センター 分子機能解析分野 助教授 |
| 飯田直子 | (独)理化学研究所 発生・再生科学総合研究センター 発生ゲノミクス研究チーム 研究員 |
| 杉本亜砂子 | (独)理化学研究所 発生・再生科学総合研究センター 発生ゲノミクス研究チーム チームリーダー |
| 高橋邦明 | 国立遺伝学研究所 系統生物研究センター 無脊椎動物遺伝研究室 助手 |
| 上田龍 | 国立遺伝学研究所 系統生物研究センター 無脊椎動物遺伝研究室 教授 |
| 蓮輪英毅 | 大阪大学 微生物病研究所 附属遺伝情報実験センター 助手 |
| 岡部勝 | 大阪大学 微生物病研究所 附属遺伝情報実験センター 教授 |
| 横田隆徳 | 東京医科歯科大学院 医歯学総合研究科 脳神経病態学(神経内科) 助教授 |
| 仁科一隆 | 東京医科歯科大学院 医歯学総合研究科 脳神経病態学(神経内科) 大学院生 |
| 竹下文隆 | 国立がんセンター研究所 がん転移研究室 リサーチレジデント |
| 落合孝広 | 国立がんセンター研究所 がん転移研究室 室長 |
| 神津知子 | 埼玉県立がんセンター 臨床腫瘍研究所 主幹 |
| 内藤雄樹 | 東京大学 大学院理学系研究科 |
| 山田智之 | 東京大学 大学院新領域創成科学研究科 特任助手 |
| 程久美子 | 東京大学 大学院理学系研究科 特任助教授 |
| 森下真一 | 東京大学 大学院新領域創成科学研究科 教授 |
| 西郷薫 | 東京大学 大学院理学系研究科 教授 |
| 櫻井仁美 | 国立遺伝学研究所 生命情報・DDBJ研究センター 研究員 |
| ロベルト・バレロ | 国立遺伝学研究所 生命情報・DDBJ研究センター 助手 |
| 五條堀孝 | 国立遺伝学研究所 生命情報・DDBJ研究センター センター長、教授 |
| 山田佳世子 | B-Bridge International Inc. Business Development |
| 水谷隆之 | B-Bridge International Inc. Business Development Director |
| 大内将司 | 東京大学 医科学研究所 基礎医科学部門 遺伝子動態分野 助手 |
| 小黒明広 | 東京大学 医科学研究所 基礎医科学部門 遺伝子動態分野 助手 |
| Penmetcha K.R.Kumar | (独)産業技術総合研究所 生物機能工学研究部門 機能性核酸研究グループ 主任研究員 |
| 井上丹 | 京都大学 大学院生命科学研究科 教授 |
| 井川善也 | 九州大学 大学院工学研究院 助教授 |
| 菅裕明 | 東京大学 先端科学技術研究センター 教授 |
| 舩渡忠男 | 京都大学 医学部 保健学科 情報理工医学講座 教授 |
| 高橋美奈子 | 東北大学大学院 医学系研究科 免疫血液病学 |
| 羽生勇一郎 | 千葉工業大学 (財)エイズ予防財団 リサーチ・レジデント |
| 黒崎直子 | 千葉工業大学 工学部 生命環境科学科 講師 |
| 高久洋 | 千葉工業大学 工学研究科 生命環境科学専攻 大学院教授 |
| 北原圭 | 東京大学 大学院工学系研究科 化学生命工学専攻 大学院生 |
| 鈴木勉 | 東京大学 大学院工学系研究科 化学生命工学専攻 助教授 |
| 和田猛 | 東京大学 大学院新領域創成科学研究科 メディカルゲノム専攻 助教授 |
| 宮川伸 | (株)リボミック |
| 北村義浩 | 東京大学医科学研究所 先端医療研究センター 感染症分野 助教授 |
| 原田和雄 | 東京学芸大学 教育学部 助教授 |
| 構成と内容 |
| 序章 | RNA入門(中村義一) |
| 1. | はじめに |
| 1.1 | RNAの研究の歴史 |
| 1.2 | RNAルネッサンス |
| 1.3 | RNA医工学と疾患 |
| 1.4 | 展望 |
| 2. | RNAとは(RNAの物性と代謝)(稲田利文) |
| 2.1 | RNAの共有結合構造 |
| 2.2 | 修飾塩基 |
| 2.3 | 生合成 |
| 2.4 | 加工 |
| 2.5 | 分解等 |
| 2.6 | RNaseを用いた解析 |
| 2.7 | RNAの構造と機能 |
| 3. | 非翻訳型RNA(ncRNA)(中村幸治) |
| 3.1 | 生体内で安定に存在するncRNAの探索 |
| 3.2 | ゲノムワイドなスクリーニングによる新規ncRNAの同定 |
| 3.3 | 真正細菌における機能性ncRNAの遺伝子発現制御機構 |
| 3.4 | 病原細菌におけるncRNAの機能解析 |
| 3.5 | アロステリックなリボスイッチによる遺伝子発現制御機構 |
| |
| 第1章 | RNA interference(RNAi)とmicroRNA(miRNA) |
| 1. | 概論(三好啓太、塩見美喜子) |
| 1.1 | はじめに |
| 1.2 | RNAiのメカニズム |
| 1.3 | miRNAによる翻訳制御機構のメカニズム |
| 1.4 | siRNAとmiRNAによる生体内プロセスの制御 |
| 1.5 | おわりに |
| 2. | 線虫(C. elegans)におけるRNAiの応用(飯田直子、杉本亜砂子) |
| 2.1 | はじめに |
| 2.2 | 線虫RNAiの概説 |
| 2.3 | RNAiを用いた線虫遺伝子の網羅的機能解析 |
| 2.4 | 実験プロトコール |
| 2.4.1 | プロトコール1:dsRNAの合成 |
| 2.4.2 | プロトコール2:dsRNAの導入と表現型の観察 |
| 3. | ショウジョウバエ(D. melanogaster)におけるRNAiの応用(高橋邦明、上田龍) |
| 3.1 | はじめに |
| 3.2 | RNAiハエバンクについての概要 |
| 3.3 | ショウジョウバエ誘導型RNAiの原理 |
| 3.4 | UAS-IR transgene構築 |
| 3.5 | おわりに |
| 4. | RNAiによる哺乳動物個体レベルでのノックダウン(蓮輪英毅、岡部勝) |
| 4.1 | はじめに |
| 4.2 | 合成siRNAの投与によるマウス個体におけるRNAi |
| 4.2.1 | ハイドロダイナミクス法を用いたsiRNAの導入 |
| 4.2.2 | siRNAの化学修飾による安定化と高効率な導入 |
| 4.2.3 | 27塩基の2本鎖RNAの可能性 |
| 4.3 | ベクターによるsiRNA(dsRNA)の発現系を用いたマウス個体におけるRNAi |
| 4.3.1 | pol IIIプロモーターを用いたRNAiトランスジェニックマウスの作製 |
| 4.3.2 | pol IIプロモーターを用いたRNAiトランスジェニックマウスの作製 |
| 4.4 | 実験例(実験プロトコール) |
| 4.4.1 | 実験材料および実験機器 |
| 4.4.2 | プロトコール |
| 5. | RNAiの神経疾患への応用(横田隆徳、仁科一隆) |
| 5.1 | はじめに |
| 5.2 | siRNAの特異性:変異遺伝子特異的なsiRNA |
| 5.3 | siRNAの特異性:Off-Target効果などの副反応 |
| 5.4 | 神経疾患への応用:ウイルス性、免疫性疾患 |
| 5.5 | 神経疾患への応用:遺伝性神経変性疾患 |
| 5.6 | 神経疾患への応用:弧発性神経変性疾患 |
| 5.7 | siRNAのin vivoへのデリバリー |
| 5.8 | 実験プロトコール |
| 5.8.1 | Hydrodynamics法を用いたマウスへのsiRNA発現プラスミドDNAの投与 |
| 5.8.2 | 臓器の採取とRNAi効果の評価 |
| 5.9 | おわりに |
| 6. | アテロコラーゲンによるがん治療を目的としたsiRNAのin vivoデリバリーシステム(竹下文隆、落谷孝広) |
| 6.1 | はじめに |
| 6.2 | siRNAのin vivoデリバリー |
| 6.3 | がんモデル動物を用いての研究 |
| 6.3.1 | アデノウイルスベクター |
| 6.3.2 | カチオニックリポソームなどの導入試薬 |
| 6.3.3 | shRNA発現プラスミドベクター |
| 6.3.4 | 抗体結合型 |
| 6.4 | アテロコラーゲン |
| 6.4.1 | アテロコラーゲンの性状と核酸との複合体の形成 |
| 6.4.2 | アテロコラーゲンによる核酸医薬のin vivoデリバリー |
| 6.5 | アテロコラーゲンによるsiRNAのin vivoデリバリーの実験プロトコール |
| 6.5.1 | プロトコール |
| 6.5.2 | 局所投与の実験例 |
| 6.5.3 | 全身投与の実験例 |
| 6.6 | おわりに |
| 7. | miRNAと疾患(神津知子) |
| 7.1 | はじめに |
| 7.2 | miRNAと疾患 |
| 7.3 | miRNAのクローニング(Ligation-mediated法) |
| 7.4 | 実験プロトコール |
| 8. | 効率的なsiRNAの設計(内藤雄樹、山田智之、程久美子、森下真一、西郷薫) |
| 8.1 | はじめに |
| 8.2 | 効率的なsiRNAの配列規則性 |
| 8.3 | siRNA設計ウェブサイト |
| 8.3.1 | ヒトvimentin遺伝子に対するsiRNAの設計例 |
| 8.3.2 | siRNA設計オプション |
| 9. | miRNAと標的遺伝子の予測(櫻井仁美、ロベルト・バレロ、五條堀孝) |
| 9.1 | はじめに |
| 9.2 | miRNAのコンピューター予測 |
| 9.3 | 動物のmiRNA標的遺伝子の予測アルゴリズム |
| 9.4 | ウェブサーバー・データベースの紹介と比較 |
| 9.4.1 | miRNA Registryの概要 |
| 9.4.2 | 名前の意味 |
| 9.4.3 | miRNA判定基準 |
| 9.4.4 | その他のデータベース |
| 9.4.5 | 標的遺伝子データベース |
| 10. | siRNA医薬品の現状と今後の展望(山田佳世子、水谷隆之) |
| 10.1 | はじめに |
| 10.2 | 創薬関連遺伝子のスクリーニング |
| 10.3 | 治療薬の開発 |
| 10.3.1 | HIV治療への応用 |
| 10.3.2 | HBV/HCV |
| 10.3.3 | 冠動脈疾患(CAD) |
| 10.3.4 | AMD |
| 10.4 | 薬物送達法の改善 |
| 10.4.1 | vehicle |
| 10.4.2 | キャリアの利用 |
| 10.4.3 | oligo末端修飾 |
| 10.4.4 | その他外力を用いた透過促進方法 |
| 10.5 | off-target等の副作用 |
| 10.6 | おわりに |
| |
| 第2章 | アプタマー |
| 1. | 概論(大内将司) |
| 1.1 | はじめに |
| 1.2 | アプタマーとは |
| 1.2.1 | SELEX法 |
| 1.2.2 | アプタマーの特徴 |
| 1.3 | SELEX法におけるさまざまな選別プロセス |
| 1.3.1 | 一般的な選別方法 |
| 1.3.2 | 標的の切り替えをともなう選別方法 |
| 1.3.3 | 精密測定装置を用いた選別方法 |
| 1.3.4 | 光架橋を応用した選別方法 |
| 1.3.5 | アロステリック・セレクション |
| 1.3.6 | 複雑な標的を用いた選別方法 |
| 1.4 | アプタマーの応用技術 |
| 1.4.1 | 標的分子精製への応用 |
| 1.4.2 | ホットスタートPCRへの応用 |
| 1.4.3 | 機能解析ツールとしての応用 |
| 1.5 | アプタマーを用いた検出システム |
| 1.5.1 | アプタマー・チップ |
| 1.5.2 | アプタマー・ビーコン |
| 1.5.3 | 近接効果を利用した検出方法 |
| 1.5.4 | 生細胞を用いた検出方法 |
| 1.6 | アプタマー医薬品 |
| 1.6.1 | 抗血管内皮細胞増殖因子アプタマー |
| 1.6.2 | 抗血液凝固因子アプタマー |
| 1.6.3 | その他 |
| 1.7 | おわりに |
| 2. | 翻訳開始因子に対するアプタマーによる制がん戦略(小黒明広) |
| 2.1 | がんと翻訳開始因子 |
| 2.2 | 翻訳開始因子に対するRNAアプタマー |
| 2.3 | SELEXのプロトコール |
| 2.3.1 | RNAプールの作製 |
| 2.3.2 | 標的に結合するRNAの選択 |
| 3. | Efficient methodologies for RNA aptamer selection, and the isolation of antiviral aptamers and their application in novel diagnostic platform development(Penmetcha K.R. Kumar) |
| 3.1 | Introduction |
| 3.2 | Aptamer selection |
| 3.2.1 | Aptamer selection methods |
| 3.2.2 | Aptamer selection by SPR |
| 3.3 | Anti-viral aptamers |
| 3.4 | Modulating aptamers |
| 3.5 | Conclusion |
| |
| 第3章 | リボザイム |
| 1. | 概論(井上丹) |
| 1.1 | はじめに |
| 1.2 | Large ribozyme(ラージリボザイム) |
| 1.3 | 構造解析 |
| 1.4 | 活性発現のメカニズム |
| 2. | 人工リボザイム |
| 2.1 | はじめに(井川善也) |
| 2.1.1 | リガーゼ・リボザイム |
| 2.1.2 | 自己切断リボザイム |
| 2.1.3 | タンパク合成に関わるリボザイム |
| 2.1.4 | その他の人工リボザイム |
| 2.2 | アミノアシルtRNA合成機能をもつ人工リボザイムとその技術的応用(菅裕明) |
| 2.2.1 | アミノアシルtRNA合成リボザイムの重要性 |
| 2.2.2 | 人工ARSリボザイムの創製 |
| 2.2.3 | 翻訳への応用:遺伝暗号の拡張 |
| 2.2.4 | PCR・試験管内転写 |
| 2.2.5 | フレキシレジンの調整 |
| 2.2.6 | アミノアシル化 |
| 2.2.7 | 無細胞翻訳系 |
| 2.3 | RNAアーキテクチャ(RNA建築学)と人工リボザイム創製への応用(井川善也) |
| 2.3.1 | 分子骨格を利用した人工酵素創製リボザイム創製 |
| 2.3.2 | 分子骨格からの人工酵素創製リボザイム創製 |
| 2.3.3 | RNAアーキテクチャ(RNA建築学) |
| 2.3.4 | RNAアーキテクチャからの人工リボザイムの進化 |
| 2.3.5 | DSLリガーゼ・リボザイムのin vitroセレクション(実験プロトコール) |
| |
| 第4章 | RNA工学プラットホーム |
| 1. | アンチセンスRNAテクノロジー(舩渡忠男、高橋美奈子) |
| 1.1 | はじめに |
| 1.2 | アンチセンス法 |
| 1.3 | ナチュラルアンチセンスRNA(naturally occurring antisense RNA) |
| 1.4 | Non-coding RNAs(ncRNAs) |
| 1.5 | インプリント遺伝子 |
| 1.6 | アンチセンスRNAの臨床応用 |
| 1.7 | 実験例 |
| 1.8 | おわりに |
| 2. | RNase PおよびtRNase Zの遺伝子治療への応用(羽生勇一郎、黒崎直子、高久洋) |
| 2.1 | はじめに |
| 2.2 | 実験プロトコール |
| 2.2.1 | 標的部位の選択およびEGSのデザイン |
| 2.3 | 実験例 |
| 3. | リボソームの立体構造と抗生物質の作用機序(北原圭、鈴木勉) |
| 3.1 | はじめに |
| 3.2 | タンパク合成のメカニズム |
| 3.3 | 30Sの立体構造と暗号解読の分子機構 |
| 3.4 | 誤翻訳を誘発する抗生物質:アミノグリコシド系 |
| 3.4.1 | パロモマイシン |
| 3.4.2 | ストレプトマイシン |
| 3.5 | Aサイトへの結合を阻害する抗生物質:テトラサイクリン |
| 3.6 | 50Sの立体構造 |
| 3.7 | ペプチド転移反応を阻害する抗生物質 |
| 3.7.1 | ピューロマイシン |
| 3.7.2 | クロラムフェニコール |
| 3.7.3 | リンコサミド |
| 3.8 | ペプチド脱出トンネルに作用する抗生物質:マクロライド系 |
| 3.9 | 新規抗生物質デザイン |
| 4. | 核酸医薬の安定化戦略(和田猛、宮川伸) |
| 4.1 | はじめに |
| 4.2 | リボース部位修飾 |
| 4.2.1 | 2´-修飾核酸 |
| 4.2.2 | LNA |
| 4.2.3 | 3´-N-ホスホロアミデートDNA |
| 4.2.4 | 4´-S-RNA |
| 4.2.5 | シュピーゲルマー |
| 4.3 | バックボーン修飾 |
| 4.3.1 | ホスホロチオエートDNA/RNA |
| 4.3.2 | ボラノホスフェートDNA/RNA |
| 4.3.3 | ペプチド核酸 |
| 4.3.4 | モノホリノホスホロジアミデート |
| 4.4 | 塩基部修飾 |
| 4.5 | RNAの末端修飾 |
| 4.6 | RNAアプタマーの修飾 |
| 5. | 核酸医薬品のデリバリーシステム(北村義浩) |
| 5.1 | ウイルス系デリバリーシステム |
| 5.1.1 | レトロウイルス |
| 5.1.2 | レンチウイルス |
| 5.1.3 | アデノウイルス |
| 5.1.4 | アデノ随伴ウイルス(Adeno-associated virus,AAV) |
| 5.1.5 | センダイウイルス(HVJ) |
| 5.2 | 非ウイルス系デリバリーシステム |
| 5.2.1 | 電気穿孔法 |
| 5.2.2 | 膜融合型リポソーム法 |
| 5.2.3 | 非膜融合型キャリア法 |
| 5.2.4 | DEAE Dextran法 |
| 6. | 人工RNA結合ペプチド(原田和雄) |
| 6.1 | はじめに |
| 6.2 | 人工RNA結合ポリペプチドを候補ポリペプチドのライブラリーから同定するためのアプローチ |
| 6.2.1 | RNAはポリペプチドによってどのように認識されているか? |
| 6.2.2 | RNA−ポリペプチド相互作用検出系の比較 |
| 6.2.3 | ライブラリーのデザイン |
| 6.3 | ファージλNタンパク質によるアンチターミネーションを利用したRNA結合ペプチドの同定 |
| 6.3.1 | アンチターミネーション法の原理 |
| 6.3.2 | LacZレポーターを用いたHIV RRE結合ペプチドの単純な(Low-Complexity)ライブラリーからの「スクリーニング」 |
| 6.3.3 | NPT IIレポーターを用いたHIV RRE結合ペプチドの複雑な(High-Complexity)ライブラリーからの「セレクション」 |
| 6.4 | おわりに |
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